第十二章 神經(jīng)系統(tǒng)
第一節(jié) 神經(jīng)干動(dòng)作電位及其傳導(dǎo)速度的測(cè)定
[實(shí)驗(yàn)?zāi)康腯
掌握神經(jīng)干標(biāo)本制備、動(dòng)作電位(actionn potential ,AP)及其傳導(dǎo)速度的測(cè)定與計(jì)算方法,了解其測(cè)定原理與相關(guān)儀器使用方法;觀察、識(shí)別蟾蜍坐骨神經(jīng)干雙相和單相動(dòng)作電位,測(cè)定其傳導(dǎo)速度;分析機(jī)械損傷或局麻藥、低溫對(duì)神經(jīng)干AP及其傳導(dǎo)速度的影響;
[實(shí)驗(yàn)對(duì)象]
蟾蜍或青蛙。
[藥品、器材]
PCLAB生物信號(hào)采集處理系統(tǒng)一套、神經(jīng)標(biāo)本盒、蛙類(lèi)手術(shù)器械、濾紙、棉球、縫合線(xiàn)、任氏液、燒杯、滴管等。
[觀察指標(biāo)]
蟾蜍或青蛙坐骨神經(jīng)干雙相、單相動(dòng)作電位及其傳導(dǎo)速度
[方法、步驟]
(1)制備坐骨神經(jīng)干標(biāo)本
破壞腦脊髓:取蟾蜍一只用自來(lái)水沖洗干凈,左手握蟾蜍,小指和無(wú)名指夾住后肢,拇指按壓背部,中指放在胸腹部,用食指下壓頭部前端使頭前俯(圖12-1),右手持金屬探針由枕骨沿正中線(xiàn)向脊柱端觸劃,當(dāng)觸到凹陷處即枕骨大孔處,可將探針由此垂直刺入皮膚入枕骨大孔后,將針折向前方插入顱腔并左右攪動(dòng)搗毀腦組織,而后退針至刺入點(diǎn)皮下,針尖向后刺入脊椎管搗毀脊髓,當(dāng)四肢松軟、呼吸消失則表示腦脊髓完全毀壞,否則應(yīng)按上法重復(fù)操作。
圖12-1 破壞蟾蜍腦脊髓的方法
剪除軀干上部及內(nèi)臟: 在骶髂關(guān)節(jié)水平以上lcm處用粗剪刀剪斷脊柱,左手執(zhí)鑷子夾緊脊柱斷端(骶骨端)并稍向上提起,使蟾蜍的頭與內(nèi)臟自然下垂,右手持大剪刀,沿兩側(cè)將蟾蜍的頭、前肢和內(nèi)臟全部剪除并棄置污物桶內(nèi)(圖12-2),僅保留后肢,腰背部脊柱及由它發(fā)出的坐骨神經(jīng)叢(呈灰白色)。
圖12-2 剪除軀干上部及內(nèi)臟
去皮:左手持粗鑷夾住脊柱斷端,不要夾住或觸及神經(jīng),右手捏住其上的皮膚邊緣向下撕去背部的皮膚后,剪去大小腿的全部皮膚。將手和用過(guò)的剪子、鑷子、蛙板等全部手術(shù)器械用自來(lái)水沖洗凈,再行以下操作。
分離兩腿:沿正中線(xiàn)將脊柱剪分為兩半(勿損傷坐骨神經(jīng)),并從恥骨聯(lián)合中央剪開(kāi)兩側(cè)大腿,使兩腿完全分離,將兩腿浸于盛有任氏液的燒杯中。
游離坐骨神經(jīng):取一后肢,腹面向上認(rèn)清坐骨神經(jīng)及其走向后,在靠近脊柱處穿線(xiàn)結(jié)扎,并在結(jié)扎線(xiàn)上剪斷神經(jīng),線(xiàn)頭保留約1cm。用鑷子夾住線(xiàn)頭,提起坐骨神經(jīng)進(jìn)行分離,沿坐骨神經(jīng)溝(股二頭肌與半膜肌之間的裂隙處)分離出大腿部的坐骨神經(jīng)并用玻璃針輕輕勾起坐骨神經(jīng)干,剪斷所有分支,分離至月國(guó)窩處可見(jiàn)有兩條分支,即脛神經(jīng)和腓神經(jīng)。剪去任一分支(腓神經(jīng)較淺,易分離,常保留),繼續(xù)分離留下的另一分支(也可兩支都分離),直至腳趾端。用線(xiàn)結(jié)扎,在結(jié)扎線(xiàn)的遠(yuǎn)端,剪斷腓神經(jīng),也保留一小段線(xiàn)頭(約1cm),全長(zhǎng)須在8厘米以上。將此完全游離的坐骨神經(jīng)干置于盛有任氏液的燒杯中備用。按同樣的方法,分離另一根坐骨神經(jīng)干備用。
(2)連接實(shí)驗(yàn)裝置(圖12-3)
將引導(dǎo)電極、刺激輸出線(xiàn)分別插入計(jì)算機(jī)主機(jī)輸入2、刺激輸出并與神經(jīng)標(biāo)本盒相應(yīng)電極相連。
(3)用任氏液棉球擦拭干凈神經(jīng)標(biāo)本盒全部電極,鑷子夾住神經(jīng)干標(biāo)本兩頭的線(xiàn)頭,將標(biāo)本安放在電極上(粗端放在刺激電極上,細(xì)端放在引導(dǎo)電極上)。
(4)觀察坐骨神經(jīng)干雙相動(dòng)作電位。開(kāi)機(jī),雙擊PCLAB圖標(biāo)進(jìn)入生物信號(hào)采集處理系統(tǒng)。按前面介紹的使用方法調(diào)試好儀器后,點(diǎn)擊“刺激”按鈕,系統(tǒng)開(kāi)始采樣,適當(dāng)調(diào)整各通道放大倍數(shù)及X、Y軸壓縮比,即可產(chǎn)生雙向動(dòng)作電位。如改刺激參數(shù)為刺激個(gè)數(shù)為2,并適當(dāng)增加時(shí)間間隔至1秒,即可觀察到神經(jīng)干的2個(gè)雙向動(dòng)作電位。
圖12-3 實(shí)驗(yàn)裝置示意圖
(5)測(cè)定神經(jīng)興奮傳導(dǎo)速度。抬起放大器面板上,S—R按鈕,并調(diào)整第四通道放大倍數(shù),可在第四通道上觀察到比第二通道在時(shí)間上稍有延遲的第二個(gè)動(dòng)作電位,同時(shí)測(cè)定神經(jīng)興奮傳導(dǎo)速度(V= d/T,V:神經(jīng)干AP傳導(dǎo)速度;d:R1與R2之間的距離;T:兩個(gè)AP起點(diǎn)的間隔時(shí)間):①測(cè)量正常AP傳導(dǎo)速度, ②將標(biāo)本置于4℃任氏液中浸泡5分鐘后,觀察AP變化測(cè)定其傳導(dǎo)速度。
(6)調(diào)換標(biāo)本方向,觀察AP有無(wú)變化。
(7)保持刺激電極與引導(dǎo)電極間距離不變,改變兩引導(dǎo)電極(R1與 R2)間距離觀察雙相AP變化。
(8)對(duì)調(diào)兩引導(dǎo)電極的位置,觀察雙相AP變化。
(9)在兩引導(dǎo)電極之間滴一滴普魯卡因,觀察AP波形變化。
(10)用鑷子將兩引導(dǎo)電極之間的神經(jīng)夾傷,觀察AP波形的改變。
(11)實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,選取“文件”下的打印,打印實(shí)驗(yàn)結(jié)果。
[注意事項(xiàng)]
(1)神經(jīng)干應(yīng)盡可能分離得長(zhǎng)一些,全長(zhǎng)須在8cm以上。
(2)神經(jīng)干分離過(guò)程中慎勿損傷神經(jīng)組織,以免影響實(shí)驗(yàn)效果。
(3)神經(jīng)干兩端要用細(xì)線(xiàn)扎住,然后浸于任氏液中備用。
(4)實(shí)驗(yàn)時(shí)應(yīng)蓋上神經(jīng)標(biāo)本盒的盒蓋并接地,以防干擾與神經(jīng)干燥。
(5)坐骨神經(jīng)干標(biāo)本可直接從剪斷軀干開(kāi)始制備。
(6)指導(dǎo)圖12-3中S1 S2:刺激電極;R1R2:引導(dǎo)電極。
[思考題]
(1)神經(jīng)干雙相和單相AP產(chǎn)生、傳導(dǎo)和引導(dǎo)原理如何?本實(shí)驗(yàn)采用方法是細(xì)胞外記錄方法,此外還有何種方法記錄AP?
(2)神經(jīng)干AP與單一神經(jīng)纖維的AP有何區(qū)別?何謂神經(jīng)干復(fù)合AP?
(3)為什么一般情況下記錄到的雙相動(dòng)作電位的波形是不對(duì)稱(chēng)的?
(4)低溫、標(biāo)本倒向、改變兩引導(dǎo)電極間距離、對(duì)調(diào)兩引導(dǎo)電極的位置、改變刺激電極和引導(dǎo)電極間的距離、用藥物阻斷或機(jī)械損傷等分別對(duì)神經(jīng)干AP的波形、傳導(dǎo)速度有何影響?為什么?
(5)何謂雙向AP、單向AP,二者有何區(qū)別?本實(shí)驗(yàn)采用什么方法引導(dǎo)觀察單向AP,另有什么方法引導(dǎo)出單向AP?
高治平 劉建芝
第二節(jié) 減壓神經(jīng)放電與動(dòng)脈血壓變化
[實(shí)驗(yàn)?zāi)康腯
學(xué)習(xí)哺乳類(lèi)動(dòng)物在體神經(jīng)干動(dòng)作電位的引導(dǎo)和血壓直接測(cè)量方法,觀察機(jī)械刺激、電刺激、藥物及神經(jīng)體液因素對(duì)家兔血壓的影響,分析減壓神經(jīng)放電的頻率、幅度、聲音與動(dòng)脈血壓的變化的相互關(guān)系。
[實(shí)驗(yàn)動(dòng)物]
家兔。
[藥品、器材]
生物信號(hào)采集處理系統(tǒng)一套、血壓換能器1個(gè)、手術(shù)器械一套、動(dòng)脈插管1個(gè)、兔手術(shù)臺(tái)1個(gè)、雙極銀絲引導(dǎo)電極1根、鐵支柱2個(gè)、試管夾、雙凹夾2個(gè)、滴管1支、玻璃分針1個(gè)、25%氨基甲酸乙酯(或3%戊巴比妥鈉)1瓶、生理鹽水1瓶、肝素生理鹽水1瓶、液體石蠟(加溫38—40℃)1瓶、1:10000去甲腎上腺素1瓶、利血平注射液1支(或1:10000乙酰膽堿等藥)、50ml注射器1個(gè)、1ml注射器2個(gè)、10ml注射器1個(gè)、紗布、紗帶、縫合線(xiàn)等。
[觀察指標(biāo)]
(1)兔減壓神經(jīng)放電頻率、幅度,監(jiān)聽(tīng)放電聲音(類(lèi)似火車(chē)開(kāi)動(dòng)樣的轟隆聲)。
(2)兔動(dòng)脈血壓。
[方法、步驟]
(1)連接實(shí)驗(yàn)裝置:將血壓換能器、生物電引導(dǎo)電極與生物信息采集處理系統(tǒng)相連接。
(2)用50ml注射器抽取肝素生理鹽水,從三通側(cè)管注入血壓換能器及其相連接的動(dòng)脈插管內(nèi),排盡管內(nèi)空氣。
(3)麻醉與固定 :秤量動(dòng)物體重,用20%氨基甲酸乙酯(1g/kg)緩慢注入耳緣靜脈,待動(dòng)物麻醉后,將其仰臥(前肢背位交叉)固定于兔手術(shù)臺(tái)上。
(4)分離減壓神經(jīng)、血管、氣管
頸前部備皮后,頸部正中切開(kāi)4-6cm,用止血鉗分離皮下組織,分開(kāi)胸舌骨肌,暴露氣管,用左手拇指和食指捏住右側(cè)切口的皮膚和肌肉,其余三指從皮膚外面略向上向外翻,暴露與氣管平行的血管神經(jīng)束,束內(nèi)有頸總動(dòng)脈、迷走神經(jīng)(最粗)、交感神經(jīng)(次之)和減壓神經(jīng)(最細(xì))。仔細(xì)辨認(rèn)三根神經(jīng),用玻璃分針將減壓神經(jīng)從血管神經(jīng)束中分離出來(lái)1.5-2cm,分離須干凈,動(dòng)作要輕柔細(xì)致,并用溫生理鹽水浸濕過(guò)的細(xì)絲線(xiàn)在其下方穿過(guò)備用。用同樣方法依次分離游船右側(cè)交感神經(jīng)、迷走神經(jīng)、氣管、兩頸總動(dòng)脈,分別穿線(xiàn)備用。
(5)做人工皮兜(也可不做)
用血管鉗把神經(jīng)周?chē)钠つw提起,做成人工皮兜,向皮兜內(nèi)滴入38—40℃液體石蠟浸泡神經(jīng),保護(hù)神經(jīng)以防干燥和溫度降低,另外,液體石蠟還具有絕緣作用。
(6)行氣管插管、左頸總動(dòng)脈插管術(shù),記錄血壓。
氣管插管:在甲狀軟骨下2—3cm,兩氣管環(huán)間做倒“T”形切口,向下插入氣管插管,用棉線(xiàn)結(jié)扎固定,便于呼吸通暢。
動(dòng)脈插管:結(jié)扎左頸總動(dòng)脈遠(yuǎn)心端后(保留結(jié)扎線(xiàn)),在其近心端夾一動(dòng)脈夾,動(dòng)脈夾與結(jié)扎之間應(yīng)相距3cm左右。在結(jié)的下方用眼科剪作一1/2斜切口,向心臟方向插入已灌滿(mǎn)肝素生理鹽水的動(dòng)脈插管,扎緊插管尖端并固定于其側(cè)管,以防插管滑出,松開(kāi)動(dòng)脈夾觀察插管內(nèi)液面是否有隨心跳波動(dòng)。
(7)用玻璃分針輕輕挑起減壓神經(jīng)放置于引導(dǎo)電極上,將電極固定于支架上,調(diào)節(jié)好引導(dǎo)電極于合適的位置,使電極與神經(jīng)良好接觸,電極不能與周?chē)M織接觸,但又不過(guò)度牽拉神經(jīng)。然后,將接地線(xiàn)夾在附近切開(kāi)的組織上。
(8)開(kāi)機(jī),雙擊生物信號(hào)采集處理系統(tǒng)圖標(biāo)。按使用方法調(diào)試準(zhǔn)備好儀器后,點(diǎn)擊“開(kāi)始”按鈕,系統(tǒng)開(kāi)始采樣,適當(dāng)調(diào)整各通道放大倍數(shù)及X、Y軸壓縮,在觀察到理想的波形曲線(xiàn)時(shí)。(注意:應(yīng)聽(tīng)到清晰的轟隆轟隆的神經(jīng)放電比聲音,如聲音太小不清楚,可調(diào)節(jié)音箱音量旋鈕,放大音量,或加大第一通道的放大倍數(shù),一般在10000至20000倍即可)。
(9)觀察正常血壓曲線(xiàn):辨認(rèn)血壓波的一級(jí)波和二級(jí)波,有時(shí)可見(jiàn)三級(jí)波。一級(jí)波(心搏波)由心室舒縮引起血壓波動(dòng),心縮時(shí)上升,心舒時(shí)下降,頻率與心率一致;二級(jí)波(呼吸波),是呼吸運(yùn)動(dòng)引起的血壓波動(dòng),吸氣時(shí),血壓先降后升,呼吸時(shí)血壓先升后降;三級(jí)波(不常出現(xiàn))可能是血管運(yùn)動(dòng)中樞緊張性的周期性變化的結(jié)果。
(10)觀察分析正常減壓神經(jīng)放電集群的特點(diǎn),并監(jiān)聽(tīng)其聲音。
(11)向下?tīng)坷翌i總動(dòng)脈遠(yuǎn)心端結(jié)扎線(xiàn)5—10秒,觀察減壓神經(jīng)放電頻率、幅度、聲音與血壓變化相互關(guān)系。
(12)從耳緣靜脈注射1:10000去甲腎上腺素0.2 -0.3m1,觀察減壓神經(jīng)放電的頻率、幅度、聲音與血壓變化相互關(guān)系。
(13)從兔耳緣靜脈注射利血平2m1或1:10000乙先膽堿0.3 m1,觀察減壓神經(jīng)放電頻率、幅度聲音與血壓變化相互關(guān)系。
(14)用動(dòng)脈夾夾閉右頸總動(dòng)脈5—10秒,觀察減壓神經(jīng)放電頻率、幅度、聲音與血壓變化相互關(guān)系(注:從此步開(kāi)始,如操作不便,可取下減壓神經(jīng),僅觀察下列因素對(duì)血壓的影響)。
(15)電刺激減壓神經(jīng)(刺激幅度:1—2v,刺激時(shí)間:5-10s),觀察血壓的變化。結(jié)扎剪斷之,分別刺激中樞端與外周端,觀察血壓的變化,為什么?
(16)電刺激迷走神經(jīng)(刺激幅度:1—2v,刺激時(shí)間:5-10s),觀察血壓的變化。結(jié)扎剪斷之,分別刺激中樞端與外周端,觀察血壓的變化,為什么?
(17)結(jié)扎剪斷和刺激交感神經(jīng)對(duì)兔耳血管網(wǎng)的影響。比較觀察左右兩耳血管網(wǎng)的數(shù)目和充血情況,然后結(jié)扎并于近心端剪斷左交感神經(jīng),稍等片刻,比較觀察左耳血管網(wǎng)與右耳有何不同?然后電刺激左交感神經(jīng)頭端(外周端)觀察其血管網(wǎng)的變化,稍侯片刻,再觀察左耳血管網(wǎng)又有何變化?為什么?
(18)從右頸總動(dòng)脈緩慢放血20ml-50ml(或維持血壓在40mmHg一定時(shí)間),觀察右耳血管網(wǎng)(及血壓)的變化。然后快速補(bǔ)液(37℃生理鹽水或5%的葡萄糖溶液)觀察血壓和右耳血管網(wǎng)及其顏色的變化。
[注意事項(xiàng)] 找準(zhǔn)減壓神經(jīng)是實(shí)驗(yàn)成敗的關(guān)鍵。
(1)麻醉不宜過(guò)淺,否則動(dòng)物掙扎,拉斷神經(jīng)或產(chǎn)生肌電干擾。
(2)減壓神經(jīng)纖細(xì),分離、勾起神經(jīng)時(shí),動(dòng)作要輕柔細(xì)致,切勿盲目牽拉,以免損傷神經(jīng),影響放電。
(3)分離要干凈,神經(jīng)上不能附有結(jié)締組織膜。引導(dǎo)電極與神經(jīng)干須緊密接觸并懸空,避免觸碰周?chē)M織,影響放電。
(4)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,可滴少量38—40℃的液體石蠟于減壓神經(jīng)起到絕緣和防止干燥的作用。
(5)引導(dǎo)電極兩極間距為2mm左右,并要干燥,以防短路而影響電位記錄。
(6)引導(dǎo)電極的導(dǎo)線(xiàn)要用屏蔽線(xiàn),方可抗干擾。電極導(dǎo)線(xiàn)不宜過(guò)長(zhǎng),避免與電源線(xiàn)或其它干擾源的導(dǎo)線(xiàn)相交,以防產(chǎn)生干擾。
(7) 實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,如發(fā)現(xiàn)電位幅度逐漸減小或50HZ干擾信號(hào),應(yīng)檢查神經(jīng)是否干燥,動(dòng)物局部和全身溫度是否過(guò)低等,適當(dāng)給予相應(yīng)處理。
(8)實(shí)驗(yàn)步驟10-13,均必須待減壓神經(jīng)放電及血壓灰復(fù)正常后,方可進(jìn)行下一步驟。
[思考題]
(1)夾閉、牽拉頸總動(dòng)脈后,減壓神經(jīng)放電、血壓各有何變化? 為什么?
(2)注入去甲和利血平后,減壓神經(jīng)放電、血壓各有何變化? 為什么?
(3)觀察心縮期與心舒期血壓和減壓神經(jīng)放電的變化,分析減壓神經(jīng)放電與血壓的相互關(guān)系。
(4)根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析斷減壓神經(jīng)是傳入神經(jīng)還是傳出神經(jīng),并說(shuō)明減壓反射的調(diào)節(jié)方式、調(diào)節(jié)過(guò)程與生理意義。
(5)本實(shí)驗(yàn)或機(jī)能學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中所采用的動(dòng)脈血壓測(cè)量法是屬直接測(cè)量法,還是屬間接測(cè)量法?
(6)請(qǐng)分析電刺激內(nèi)臟大神經(jīng)時(shí),血壓變化如何?為什么?
高治平 劉建芝
第三節(jié) 香煙的毒性作用
[實(shí)驗(yàn)?zāi)康模?/b>
觀察煙對(duì)小鼠的毒性作用,以明確吸煙對(duì)人體的危害。
[實(shí)驗(yàn)動(dòng)物]
小鼠。
[藥品、器材]
水煙斗、火柴、1.0ml注射器、10.0m1量筒,香煙、生理鹽水。
[觀察指標(biāo)]
小鼠的肌肉活動(dòng)、呼吸、末梢循環(huán)情況,最后是否死亡。
[方法、步驟]
(1)量筒量取生理鹽水4.0m1置于煙斗內(nèi),搖勻后,先用注射器抽取1.0ml液體(對(duì)照組用),然后,將香煙插于水煙斗上并點(diǎn)燃,于煙斗嘴處用洗耳球抽吸促使繼續(xù)燃燒(如圖5-1),使煙霧經(jīng)煙斗內(nèi)溶液過(guò)濾,此時(shí),煙霧內(nèi)部分水溶性毒物如尼古丁(煙鹼)等,即溶于水中。
(2)取小鼠2只,觀察正常情況后,甲鼠腹腔注射煙過(guò)濾液0.5m1,乙鼠則腹腔注射吸煙前煙斗內(nèi)溶液0.5m1做對(duì)照,逐步觀察并比較兩小鼠的表現(xiàn)(肌肉活動(dòng)、呼吸、末梢循環(huán))。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果填入下表:
表5-1 香煙濾液對(duì)小鼠的毒性作用
| 肌肉活動(dòng) | 呼吸 | 末梢循環(huán) | 死亡 |
甲鼠 乙鼠 | | | | |
[思考題]
含有尼古丁的煙過(guò)濾液為什么可使小鼠出現(xiàn)一系列中毒表現(xiàn)?
圖5-1 a煙斗嘴 b生理鹽水 c點(diǎn)燃的香煙
(黃紅林 謝志忠)
第四節(jié) 有機(jī)磷酸酯類(lèi)的中毒與解救
[實(shí)驗(yàn)?zāi)康模?
(1)觀察實(shí)驗(yàn)動(dòng)物在有機(jī)磷酸酯類(lèi)中毒時(shí)的癥狀,以及中毒時(shí)血液膽堿酯酶活力的抑制情況。
(2)根據(jù)阿托品、解磷定對(duì)有機(jī)磷酸酯類(lèi)中毒的解救效果及對(duì)血液膽堿酯酶活力的影響,分析兩藥的解毒原理。
[實(shí)驗(yàn)動(dòng)物]
家兔2只,性別不拘。
[藥品、器材]
30%精制敵百蟲(chóng)溶液、0.2%高級(jí)職稱(chēng)考試網(wǎng)硫酸阿托品溶液、2.5%解磷定溶液、二甲苯。家兔固定箱、注射器、預(yù)先加草酸鉀的試管、試管架、刀片、干棉球、瞳孔尺與木夾。
[參考指標(biāo)]
見(jiàn)表4-1。
[方法、步驟]
(1)取家兔2只,以甲、乙編號(hào),稱(chēng)其體重,觀察活動(dòng)情況和呼吸(頻率、幅度、是否困難等)
、瞳孔大小、唾液分泌、大小便、肌張力、有無(wú)震顫等,分別加以記錄。
&nbs執(zhí)業(yè)藥師p; (2)將2只家兔分別固定于箱內(nèi),以蘸有二甲苯的棉球涂擦耳殼,使血管擴(kuò)張。
當(dāng)充血明顯時(shí),用刀片切割耳靜脈(切口不要過(guò)大、過(guò)深),讓血液自然流出,滴入預(yù)先置有少量草酸鉀結(jié)晶的試管中,立即搖勻,供測(cè)定血液膽堿酯酶活力之用,如取血后切口流血不止,可用干棉球按住,再夾上木夾止血。
(3)將2只家兔同樣給予有機(jī)磷酸酯類(lèi)藥物。腹腔注射30%敵百蟲(chóng)1.0mg/Kg,密切注意給藥后家兔各項(xiàng)生理指標(biāo)的變化,加以記錄,中毒癥狀明顯后,再按上述方法取血,留待膽堿酯酶活力測(cè)定。
(4)立即給甲兔由耳緣靜脈注射0.2%硫酸阿托品溶液1.0 ml/kg,給乙兔由耳緣靜脈注射2.5%解磷定2.0ml/kg,然后每隔5min,再檢查各項(xiàng)生理指標(biāo)1次,觀察2只家兔的情況有無(wú)好轉(zhuǎn),特別注意甲兔和乙兔的區(qū)別。待有關(guān)中毒癥狀明顯消減以后,再由2只家兔的靜脈取血,測(cè)定血液膽堿酯酶活力。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果按表4-1的內(nèi)容逐項(xiàng)填寫(xiě)。
表4-1 有機(jī)磷酸酯類(lèi)中毒與解救的實(shí)驗(yàn)結(jié)果
兔號(hào) | 體重(kg) | 用藥情況 | 瞳孔(mm) | 唾液 | 呼吸 | 大小便 | 肌張力 | 震顫 | 結(jié)果 |
甲 | | 用藥前敵百蟲(chóng)阿托品 | | | | | | | |
乙 | | 用藥前敵百蟲(chóng)解磷定 | | | | | | | |
[注意事項(xiàng)]
(1)敵百蟲(chóng)屬于劇毒類(lèi)殺蟲(chóng)劑,且可從皮膚吸收,如與手等接觸后,應(yīng)立即用水清洗。
(2)給家兔實(shí)施腹腔注射敵百蟲(chóng)后,15min時(shí)仍未出現(xiàn)中毒癥狀,可再追加1/3劑量的敵百蟲(chóng)溶液。
(3)本實(shí)驗(yàn)為分析阿托品和解磷定的作用機(jī)制而設(shè)。應(yīng)切記,在臨床實(shí)際中,須將阿托品與解磷定配合使用,才能獲得最好的解毒效果。
[思考題]
試根據(jù)本次實(shí)驗(yàn)結(jié)果,分析有機(jī)磷酸酯類(lèi)的中毒機(jī)制及阿托品和解磷定的解毒原理。
附:全血膽堿酯酶活力的比色測(cè)定法
一、原理
血液膽堿酯酶催化乙酰膽堿的水解。在一定條件下,水解的乙酰膽堿量與酶的活力有關(guān)。故加入一定量的乙酰膽堿,使之與血液作用后,測(cè)定剩余乙酰膽堿之量,便可知已水解的乙酰膽堿量,從而測(cè)出膽堿酯酶的活力。
剩余乙酰膽堿的測(cè)定是利用乙酰膽堿與羥胺作用生成羥肟酸,后者在酸性條件下又與三價(jià)鐵離子作用,生成紅棕色的羥肟酸鐵絡(luò)合物。
二、器材
試管、試管架、吸管、恒溫水浴、光電比色計(jì)。
三、試劑
(1)2/15mol/L磷酸氫二鈉溶液:稱(chēng)取Na2HPO4·12H2O 23.87g,用蒸餾水溶解并稀釋至500m1。
(2)2/15mol/L 磷酸二氫鉀溶液:稱(chēng)取KH2P04 9.08g,用蒸餾水溶解并稀釋至500 ml。
(3)pH7.2磷酸鹽緩沖液:取2/15 mol/L磷酸氫二鈉溶液72ml,與2/15mol/L磷酸氫二鉀溶液28ml混和即成。
(4)0.1mol/LpH4.5醋酸鹽緩沖液:先由每升冰醋酸5.78m1之水溶液28ml和每升含醋酸鈉(不含結(jié)晶水)8.20g之水溶液22ml混和,成為0.1 mol/L pH4.5之醋酸鹽緩沖液,再用蒸餾水稀釋到l/100倍。
(5)0.07mol/L乙酰膽堿底物貯存液:快速稱(chēng)取氯化乙酰膽堿0.127g(或溴化乙酰膽堿0.158g),溶于0.001mol/L PH4.5醋酸鹽緩沖液10m1中。在冰箱中可保存4周。
(6)0.007 mol/L乙酰膽堿底物應(yīng)用液:臨用前取0.07 mol/L乙酰膽堿底物貯存液,用pH7.2磷酸鹽緩沖液稀釋到1/10倍。
(7)堿性羥胺溶液:臨用前20分鐘內(nèi)取等量的14%氫氧化鈉溶液和14%鹽酸羥胺溶液,混和即成。
(8)33.3%(V/V)鹽酸溶液:取比重為1.18的鹽酸50ml,加蒸餾水100ml。
(9)10%三氯化鐵溶液:稱(chēng)取FeCl3·6H2O 10g,用0.1 mol/L 鹽酸溶解,使成100ml。
四、實(shí)驗(yàn)方法
按表4-2進(jìn)行操作,每加一種試劑后均須充分搖勻,保溫時(shí)間須嚴(yán)格控制。
表4-2 比色測(cè)定法的實(shí)驗(yàn)操作步驟
步驟 | 操 作 | 標(biāo)準(zhǔn)管(m1) | 測(cè)定管(m1) | 空白管(m1) |
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 | pH7. 2磷酸鹽緩沖液 全血 37℃水浴預(yù)熱3min 乙酰膽堿底物應(yīng)用液 37℃水浴預(yù)熱20min 堿性羥胺溶液 乙酰膽堿底物應(yīng)用液 室溫靜置2min 33.3%鹽酸溶液 10%三氯化鐵溶液 | 1.0 0.1 1.0 4.0 — 2.0 2.0 | 1. 0 0.1 1.0 4.0 — 2.0 2.0 | l.0 0.1 — 4.0 1.0 2.0 2.0 |
用濾紙過(guò)濾,于15min內(nèi)用分光光度計(jì)比色,在525nm處比色,以空白管校正光密度到0點(diǎn),讀取各管吸光度計(jì)算
標(biāo)準(zhǔn)管吸光度—測(cè)定管吸光度=全血ChE活力單位數(shù)
標(biāo)準(zhǔn)管吸光度
注:以1m1血液在規(guī)定條件下能分解lμmo1乙酰膽堿為1個(gè)膽堿酯酶活力單位。
(黃紅林 謝志忠)