實用免疫細(xì)胞與核酸:第三節(jié)　PCR操作范例及反應(yīng)體系的組成

一、PCR操作范例

在一個典型的PCR反應(yīng)體系中需加入：適宜的緩沖液、微量的模板DNA、4×dNTPs、耐熱性多聚酶、Mg²⁺和兩個合成的DNA引物。模板DNa 94℃變性1min，引物與模板40～60℃退火1min，72℃延伸2min。在首次循環(huán)前模板預(yù)變性3～5min；在末次循環(huán)后，樣品仍需繼續(xù)延伸3～5min以上，確保擴(kuò)增的DNA為雙鏈DNA。為便于了解PCR反應(yīng)中各成份的組成，加入量和反應(yīng)條件，使人們以此為基礎(chǔ)，對不同的研究對象逐項改變來找到最佳反應(yīng)條件，特列舉Perkin Elmer Cetus公司Gene Amp DNA試劑盒提供的典型反應(yīng)條件供參考。

表22-1 PCR反應(yīng)混合液

擴(kuò)增條件：94℃60s,37℃60s,72℃120s,共25～30個循環(huán)。

注：[1]反應(yīng)緩沖液[10×]含：100mmol/l Tris-HCl pH8.3(25℃),

15mmol/L KCl, 15mmol/L MgCl₂,

0.01%(W/V)明膠（Sigma G2500)

[2]酶儲存緩沖液（-20℃)含：50%甘油，100mmol/l KCl,

20mmol/L Tris-HCl ph8.0

0.1mmol/L EDTA, 1.0mmol/L DTT

200μg/ml明膠

0.5%吐溫20，0.5% Nonidet P40

[3][4]引物，1，2：擴(kuò)增λ-噬菌體基因中500bp的片段

引物1序列：7131～7155（5’)-GATGAGTTCGTGTCCGTACAACTGG-(3’)

引物2序列：7606～7630（5’)-GGTTATCGAAATCAGCCACAGCGCC-(3’)

注意（3’)端有2個bp互補(bǔ)故易生成50bp的雙體

二、PCR反應(yīng)系統(tǒng)的組成

（一)PCR緩沖液（PCrBuffer)

用于PCR的標(biāo)準(zhǔn)緩沖液見PCR操作范例。于72℃時，反應(yīng)體系的pH值將下降1個單位，接近于7.2。二價陽離子的存在至關(guān)重要，影響PCR的特異性和產(chǎn)量。實驗表明，Mg²⁺優(yōu)于Mn²⁺，而Ca²⁺無任何作用。

1．Mg²⁺濃度Mg²⁺的最佳濃度為1.5mmol/L(當(dāng)各種dNTP濃度為200mmol/L時)，但并非對任何一種模板與引物的結(jié)合都是最佳的。首次使用靶序列和引物結(jié)合時，都要把Mg²⁺濃度調(diào)到最佳，其濃度變化范圍為1～10mmol/L。Mg²⁺過量易生成非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物，Mg²⁺不足易使產(chǎn)量降低。

樣品中存在的較高濃度的螯合劑如EDTA或高濃度帶負(fù)電荷的離子基團(tuán)如磷酸根，會與Mg²⁺結(jié)合而降低Mg²⁺有效濃度。因此，用作模板的DNA應(yīng)溶于10mmol/l Tris-HCl(pH7.6)0.1mmol/L EDTA中。

dNTP含有磷酸根，其濃度變化將影響Mg²⁺的有效濃度。標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體系中4×dTNPs的總濃度為0.8mmol/L，低于1.5mmol/L的Mg²⁺濃度。因此，在高濃度DNA及dNTP條件時，必須相應(yīng)調(diào)整Mg²⁺的濃度。

2．Tris -HCl緩沖液在PCR中使用10～50mmol/L的Tris –HCl緩沖液，很少使用其他類型的緩沖液。Tris緩沖液是一種雙極化的離子緩沖液，pKa為8.3(20℃),△pKa為0.021/℃。因此，20mmol/l Tris pH8.3(20℃)時，在典型的熱循環(huán)條件下，真正的pH值在7.8～6.8之間。

3．KCl濃度K⁺濃度在50mmol/L 時能促進(jìn)引物退火。但現(xiàn)在的研究表明，NaCl濃度在50mmol/L時，KCl濃度高于50mmol/L將會抑制Taq酶的活性，少加或不加KCl對PCR結(jié)果沒有太大影響。

4．明膠明膠和BSA或非離子型去垢劑具有穩(wěn)定酶的作用。一般用量為100μg/ml，但現(xiàn)在的研究表明，加或不加都能得到良好和PCR結(jié)果，影響不大。

5．二甲基亞砜（DMSO)在使用Klenow片段進(jìn)行PCR時DMSO是有用的；加入10%DM－SO有利于減少DNA的二級結(jié)構(gòu)，使（G+C)%含量高的模板易于完全變性，在反應(yīng)體系中加入DMSO使PCR產(chǎn)物直接測序更易進(jìn)行，但超過10%時會抑制Taq DNA聚合酶的活性，因此，大多數(shù)并不使用DMSO。

（二)四種脫氧三磷酸核苷酸（4×dNTPs)

在PCR反體系中dNTP終濃度高于50mmol/L會抑制Taq酶的活性，使用低濃度dNTP可以減少在非靶位置啟動和延伸時核苷酸錯誤摻入，高濃度dNTPs易產(chǎn)生錯誤摻入，而濃度太低，勢必降低反應(yīng)物的產(chǎn)量。PCR常用的濃度為50～200μmol/L，不能低于10～15μmol/L。四種dNTP的濃度應(yīng)相同，其中任何一種濃度偏高或偏低，都會誘導(dǎo)聚合酶的錯誤摻入，降低合成速度，過早終止反應(yīng)。

決定最低dNTP濃度的因素是靶序列DNA的長度和組成，例如，在100μl反應(yīng)體系中，4×dNTPs濃度若用20μmol/L，基本滿足合成2.6μg DNA或10pmol的400bp序列。50μmol/L的4×dNTPs可以合成6.6μgDNA,而200μmol/L足以合成25μg/DNA。

購自廠商的dNTP溶液一般均未調(diào)pH，應(yīng)用1mol/l NaOH將dNTP貯存液pH調(diào)至7.0，以保證反應(yīng)的pH值不低于7.1。市購的游離核苷酸凍干粉，溶解后要用NaOH中和，再用紫外分光光度計定量。

（三)引物的量

引物在PCR反應(yīng)中的濃度一般在0.1～1μmol/L之間。濃度過高易形成引物二聚體且產(chǎn)生非特異性產(chǎn)物。一般來說用低濃度引物經(jīng)濟(jì)、特異，但濃度過低，不足以完成30個循環(huán)的擴(kuò)增反應(yīng)，則會降低PCR的產(chǎn)率。

（四)TaqDNA聚合酶的量

典型PCR反應(yīng)混合物中，所用酶濃度為2.5U/μl，常用范圍為1～4U/100μl。由于DNA模板的不同和引物不同，以及其它條件的差異，多聚酶的用量亦有差異，酶量過多會導(dǎo)致非特異產(chǎn)物的增加。

由于生產(chǎn)廠家所用兵配方、制造條件以及活性定義不同，不同廠商供應(yīng)的TaqDNA聚合酶性能也有所不同。

Cetus公司酶定義是：1個酶單位是指在以下分析條件下，于74℃，30min內(nèi)使10nmmol的dNTP摻入酸不溶性成分所需的酶。測定時間為10min，折算成30min摻入量。

分析條件為25nmol/L TAPS（三羥基-甲基-氨基丙烷磺酸鈉pH9.3,25℃),50mmol/l KCl, 2mmol/L MgCl₂,1mmol/L β-ME（巰基乙醇)，dATP、dTTP、dGTP各200mmol/L，dCTP為100mmol/L(由不標(biāo)記及α-³²P標(biāo)記混合)，12.μg變性鯡魚精子DNA，最終體積50μl。

（五)模板

單、雙鏈DNA或RNA都可以作為PCR的樣品。若起始材料是RNA，須先通過逆轉(zhuǎn)錄得到第一條cDNA。雖然PCR可以僅用極微量的樣品，甚至是來自單一細(xì)胞的DNA，但為了保證反應(yīng)的特異性，還應(yīng)用ng級的克隆DNA，μg水平的單拷貝染色體DNA或10⁴拷貝的待擴(kuò)增片段作為起始材料，模板可以是粗品，但不能混有任何蛋白酶、核酸酶、Taq DNA聚合酶抑制劑以及能結(jié)合DNA的蛋白。

DNA的大小并不是關(guān)鍵的因素，但當(dāng)使用極高分子量的DNA（如基因組的DNA時)，如用超聲處理或用切點罕見的限制酶（如Sal₁和Not₁)先行消化，則擴(kuò)增效果更好。閉環(huán)靶序列DNA的擴(kuò)增效率略低于線狀DNA，因此，用質(zhì)粒作反應(yīng)模板時最好先將其線狀化。

模板靶序列的濃度因情況而異，往往非實驗人員所控制，實驗可按已知靶序列量逆減的方式（1ng,0.1ng,0.001ng等)，設(shè)置一組對照反應(yīng)，以檢測擴(kuò)增反應(yīng)的靈敏度是否符合要求。

（六)石蠟油

PCR擴(kuò)增時建議在混合物上面鋪一層石蠟油，減少PCR過程中尤其是變性時液體蒸發(fā)所造成的產(chǎn)物的丟失。研究表明，應(yīng)用石蠟油可使擴(kuò)增產(chǎn)量增加5倍，可能與石蠟油維持熱恒定和整個反應(yīng)體系中鹽濃度有關(guān)。

三、電泳分析

在實際工作中常采用瓊脂糖凝膠電泳。一般情況下先在電泳緩沖液或凝膠中加1%溴化乙錠（EB)（每100ml加100μl)，然后將已經(jīng)制備好的1%～2%瓊脂糖凝膠（用電泳緩沖液配制)放入電泳槽內(nèi)，加入待測樣品10μl，同時用分子量標(biāo)準(zhǔn)品作標(biāo)記。瓊脂糖濃度應(yīng)按分離DNA片段的大小進(jìn)行選擇，一般用1.5%～2%，電泳電壓75V，待樣品進(jìn)行凝膠內(nèi)距膠末端1cm時，切斷電源，取出凝膠在紫外燈下直接觀察結(jié)果。

由于溴化乙錠可與雙鏈DNA形成結(jié)合物，在紫外燈下能發(fā)射熒光，使EB的熒光強(qiáng)度增強(qiáng)80～100倍，所以，電泳后凝膠在紫外燈下可直接觀察。一般肉眼觀察DNA量可達(dá)10ng，其熒光強(qiáng)度與DNA含量成正比。

DNA分子在凝膠中泳動速度決定于電荷效應(yīng)及分子效應(yīng)。前者由所帶凈電荷量決定，而后者與分子大小及構(gòu)型有關(guān)。按照DNA分子大小，其凝膠濃度可做不同的調(diào)整。有條件的實驗室也可用聚丙烯酰胺凝膠電泳（PAGE)分析擴(kuò)增的DNA片段。

表22-2 電泳檢測擴(kuò)增結(jié)果，EB熒光顯色（254nm)

第四節(jié)　影響PCR的主要因素

PCR技術(shù)必須有人工合成的合理引物和提取的樣品DNA，然后才進(jìn)行自動熱循環(huán)，最后進(jìn)行產(chǎn)物鑒定與分析。引物設(shè)計與合成目前只能在少數(shù)技術(shù)力量較強(qiáng)的研究院、所進(jìn)行，臨床應(yīng)用只需購買PCR檢測試劑盒就可開展工作，PCR自動熱循環(huán)中影響因素很多，對不同的DNA樣品，PCR反應(yīng)中各種成份加入量和溫度循環(huán)參數(shù)均不一致�，F(xiàn)將幾種主要影響因素介紹如下。

一、溫度循環(huán)參數(shù)

在PCR自動熱循環(huán)中，最關(guān)鍵的因素是變性與退火的溫度。如操作范例所示，其變性、退火、延伸的條件是：94℃60s, 37℃60s, 72℃120s，共25～30個循環(huán)，擴(kuò)增片段500bp。在這里，每一步的時間應(yīng)從反應(yīng)混合液達(dá)到所要求的溫度后開始計算。在自動熱循環(huán)儀內(nèi)由混合液原溫度變至所要求溫度的時間需要30～60s，這一遲滯時間的長短取決于幾個因素，包括反應(yīng)管類型、壁厚、反應(yīng)混合液體積、熱源（水浴或加熱塊)以及兩步驟間的溫度差，在設(shè)置熱循環(huán)時應(yīng)充分給以重視和考慮，對每一儀器均應(yīng)進(jìn)行實測。

關(guān)于熱循環(huán)時間的另一個重要考慮是兩條引物之間的距離；距離越遠(yuǎn)，合成靶序列全長所需的時間也越長，前文給出的反應(yīng)時間是按最適于合成長度500bp的靶序列擬定的。下面就各種溫度的選擇作一介紹。

1．模板變性溫度變性溫度是決定PCR反應(yīng)中雙鏈DNA解鏈的溫度，達(dá)不到變性溫度就不會產(chǎn)生單鏈DNA模板，PCR也就不會啟動。變性溫度低則變性不完全，DNA雙鏈會很快復(fù)性，因而減少產(chǎn)量。一般取90～95℃。樣品一旦到達(dá)此溫度宜迅速冷卻到退火溫度。DNA變性只需要幾秒種，時間過久沒有必要；反之，在高溫時間應(yīng)盡量縮短，以保持Taq DNA聚合酶的活力，加入Taq DNA聚合酶后最高變性溫度不宜超過95℃。

2．引物退火溫度退火溫度決定PCR特異性與產(chǎn)量；溫度高特異性強(qiáng)，但過高則引物不能與模板牢固結(jié)合，DNA擴(kuò)增效率下降；溫度低產(chǎn)量高，但過低可造成引物與模板錯配，非特異性產(chǎn)物增加。一般先由37℃反應(yīng)條件開始，設(shè)置一系列對照反應(yīng)，以確定某一特定反應(yīng)的最適退火溫度。也可根據(jù)引物的（G+C)%含量進(jìn)行推測，把握試驗的起始點，一般試驗中退火溫度Ta(annealing temperature)比擴(kuò)增引物的融解溫度TTm(meltingtemperature)低5℃，可按公式進(jìn)行計算：

Ta = Tm -5℃= 4(G+C)+ 2(A+T)-5℃

其中A，T，G，C分別表示相應(yīng)堿基的個數(shù)。例如，20個堿基的引物，如果（G+C)%含量為50%時，則Ta的起點可設(shè)在55℃。在典型的引物濃度時（如0.2μmol/L),退火反應(yīng)數(shù)秒即可完成，長時間退火沒有必要。

3．引物延伸溫度溫度的選擇取決于Taq DNA聚合酶的最適溫度。一般取70～75℃，在72℃時酶催化核苷酸的標(biāo)準(zhǔn)速率可達(dá)35～100個核苷酸/秒。每分鐘可延伸1kb的長度，其速度取決于緩沖溶液的組成、pH值、鹽濃度與DNA模板的性質(zhì)。擴(kuò)增片段如短于150bp，則可省略延伸這一步，而成為雙溫循環(huán)，因Taq DNA聚合酶在退火溫度下足以完成短序列的合成。對于100～300bp之間的短序列片段，采用快速、簡便的雙溫循環(huán)是行之有效的。此時，引物延伸溫度與退火溫度相同。對于1kb以上的DNA片段，可根據(jù)片段長度將延伸時間控制在1～7min，與此同時，在PCR緩沖液中需加入明膠或BSA試劑，使Taq DNA聚合酶在長時間內(nèi)保持良好的活性與穩(wěn)定性；15%～20%的甘油有助于擴(kuò)增2.5kb左右或較長DNA片段。

4．循環(huán)次數(shù)常規(guī)PCR一般為25～40個周期。一般的錯誤是循環(huán)次數(shù)過多，非特異性背景嚴(yán)重，復(fù)雜度增加。當(dāng)然循環(huán)反應(yīng)的次數(shù)太少，則產(chǎn)率偏低。所以，在保證產(chǎn)物得率前提下，應(yīng)盡量減少循環(huán)次數(shù)。

擴(kuò)增結(jié)束后，樣品冷卻并置4℃保存。

二、引物引物設(shè)計

要擴(kuò)增模板DNA，首先要設(shè)計兩條寡核苷酸引物，所謂引物，實際上就是兩段與待擴(kuò)增靶DNA序列互補(bǔ)的寡核苷酸片段，兩引物間距離決定擴(kuò)增片段的長度，兩引物的5’端決定擴(kuò)增產(chǎn)物的兩個5’末端位置。由此可見，引物是決定PCR擴(kuò)增片段長度、位置和結(jié)果的關(guān)鍵，引物設(shè)計也就更為重要。

引物設(shè)計的必要條件是與引物互補(bǔ)的靶DNA序列必須是已知的，兩引物之間的序列未必清楚，這兩段已知序列一般為15～20個堿基，可以用DNA合成儀合成與其對應(yīng)互補(bǔ)的二條引物，除此之外，引物設(shè)計一般遵循的原則包括：

1．引物長度根據(jù)統(tǒng)計學(xué)計算，長約17個堿基的寡核苷酸序列在人的基因組中可能出現(xiàn)的機(jī)率的為1次。因此，引物長度一般最低不少于16個核苷酸，而最高不超過30個核苷酸，最佳長度為20～24個核苷酸。這樣短的寡核苷酸在聚合反應(yīng)溫度（通過72℃)下不會形成穩(wěn)定的雜合體。有時可在5’端添加不與模板互補(bǔ)的序列，如限制性酶切位點或啟動因子等，以完成基因克隆和其他特殊需要；引物5’端生物素標(biāo)記或熒光標(biāo)記可用于微生物檢測等各種目的。

有時引物不起作用，理由不明，可移動位置來解決。

2．（G+C)%含量引物的組成應(yīng)均勻，盡量避免含有相同的堿基多聚體。兩個引物中（G+C)%含量應(yīng)盡量相似，在已知擴(kuò)增片段（G+C)%含量時宜接近于待擴(kuò)增片段，一般以40%～60%為佳。

3．引物內(nèi)部應(yīng)避免內(nèi)部形成明顯的次級結(jié)構(gòu)，尤其是發(fā)夾結(jié)構(gòu)（hairpinstructures)。例如：

4．引物之間兩個引物之間不應(yīng)發(fā)生互補(bǔ)，特別是在引物3’端，即使無法避免，其3’端互補(bǔ)堿基也不應(yīng)大于2個堿基，否則易生成“引物二聚體”或“引物二倍體”（Primer dimer)。所謂引物二聚體實質(zhì)上是在DNA聚合酶作用下，一條引物在另一條引物序列上進(jìn)行延伸所形成的與二條引物長度相近的雙鏈DNA片段，是PCR常見的副產(chǎn)品，有時甚至成為主要產(chǎn)物。

另外，兩條引物之間避免有同源序列，尤為連續(xù)6個以上相同堿基的寡核苷酸片段，否則兩條引物會相互競爭模板的同一位點；同樣，引物與待擴(kuò)增靶DNA或樣品DNA的其它序列也不能存在6個以上堿基的同源序列。否則，引物就會與其它位點結(jié)合，使特異擴(kuò)增減少，非特異擴(kuò)增增加。

5．引物3’端配對DNA聚合酶是在引物3’端添加單核苷酸，所以，引物3’端5～6個堿基與靶DNA的配對要求必須精確和嚴(yán)格，這樣才能保證PCR有效擴(kuò)增。

引物設(shè)計是否合理可用PCRDESN軟件和美國PRIMER軟件進(jìn)行計算機(jī)檢索來核定。

人工合成的寡核苷酸引于最好經(jīng)過色譜（層析)純化或PAGE純化，以除去未能合成至全長的短鏈等雜質(zhì)。純化引物在25%乙腈溶液中4℃保存可阻止微生物的生長；一般情況下，不用的引物應(yīng)保存在-20℃冰箱中，在液體中引物能保存6個月，凍干后可保存1～2年。

三、DNA聚合酶

早在1956年Kornberg等就從大腸桿菌提取液中發(fā)現(xiàn)了DNA聚合酶，并且得到了DNA聚合酶Ⅰ純品。DNA聚合酶Ⅰ是由分子量為109000的一條多肽鏈構(gòu)成，此酶可被枯草桿菌蛋白酶分解為兩個片段，一個片段分子量為76000，有聚合酶活性，并有3’→5外切酶活力，即Klenow片段（Klenow fragment)。另一個片段分子量為34000，具有5’→’3’外切酶活力。因此，DNA聚合酶具有幾種功能：一是聚合作用，以DNA為模板，將dNTP中的脫氧單核苷酸逐個加到3-OH末端。二是有’3’→5’外切酶活力，能識別和消除錯配的引物末端，與復(fù)制過程中校正功能有關(guān)。三是5’→3’外切酶活力，它能從5’端水解核苷酸，還能經(jīng)過幾個核苷酸起作用，切除錯配的核苷酸。1985年Mullis 等發(fā)明了PCR方法，以Klenow片段完成β-珠蛋白的PCR后，世界上許多實驗室就考慮用耐熱DNA聚合酶代替Klenow片段進(jìn)行PCR，使耐熱多聚酶的研究得以迅速發(fā)展。人們從生活于60℃（B.Stearothermophilus)到87℃（S.Solfatavicus)的許多菌中分離純化出耐熱DNA聚合酶，但有些酶不能耐受DNA變性所需溫度，所以無法應(yīng)用于PCR�，F(xiàn)就PCR反應(yīng)中常用的DNA聚合酶等作一詳細(xì)介紹。

1．Taq DNA聚合酶用Taq DNA聚合酶代替大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的Klenow片段是使PCR普及應(yīng)用的關(guān)鍵。Klenow片段不能耐受95℃的雙鏈DNA變性溫度，所以每次循環(huán)都要加入新酶；而Taq DNA聚合酶可以耐受93～95℃的高溫，避免了不斷補(bǔ)加多聚酶的繁瑣操作，同時使退火和延伸溫度得以提高，減少了非特異性產(chǎn)物和DNA二級結(jié)構(gòu)對PCR的干擾，增進(jìn)了PCR特異性、產(chǎn)量和敏感度，二者相比，其主要區(qū)別在于：①Klenow酶的最適溫度為37℃，擴(kuò)增的產(chǎn)物并非全是目的序列，需用探針檢測。Taq酶則不僅產(chǎn)率高而特異性也高。它的最適溫度為74～75℃。因而使退火溫度可以提高，使退火嚴(yán)格性提高，減少錯配引物的延伸。②循環(huán)后期酶量漸感不足而產(chǎn)生平坡。到達(dá)平玻的循環(huán)次數(shù)，Klenow酶為20個（均用1μg基因組DNA開始)而Taq酶為30個。③延伸片段長度Taq酶為10kb以內(nèi)，而Klenow酶為400bp以內(nèi)。

Taq酶由水棲高溫菌（Thermusaquatics)YT1蓖株中分離而得。此菌于1969年由Brock分離自美國黃石公園溫泉，作為棲熱桿菌的標(biāo)準(zhǔn)菌株，其生長溫度為70～75℃。最初從中分離到分子量60～68KDa，比活性為2000～8000U/mg的DNA聚合酶。后來Cetus公司的Kary Mullis等又分離到比活為20萬U/mg的純酶，分子量為93910。此種9.4KDa酶的最適溫度為75～80℃，與單純核苷酸的結(jié)合率（Kcat)可達(dá)150核苷酸（nt)/s酶分子。以M₁₃模板，用富含G+C的30bp引物延伸，70℃時Kact>60nt/s；55℃可達(dá)24nt/s；37℃時為1.5nt/s，而22℃時低至0.25nt/s。高于90℃時DNA合成活性甚差，這種高溫條件下，引物與模板已不能牢固結(jié)合。

在PCR反應(yīng)混合液中，Taq酶于92.5℃,95℃及97.5℃保持其50%活力的時間分別為130、40及5～6min，在50次循環(huán)的PCR中當(dāng)管內(nèi)最高溫度為95℃。每循環(huán)為20s時尚可保持65%活力。Taq 酶在95℃的半壽期為40min，故在PCR循環(huán)中選用的變性溫度，不宜高于95℃。

Taq酶現(xiàn)已可用基因重組的方法生產(chǎn)，商品名為Ampli Taq（Cetus公司)。Taq酶的完整基因長2499bp，在大腸桿菌中表達(dá)生產(chǎn)，含832個氨基酸。在氨基酸序列上與大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ有38%是一致的，包括對dNTP結(jié)合，引物與模板作用區(qū)均存在于Taq酶中。

Taq酶具有依賴DNA合成的5’→’3’外切酶活性，因此，模板上有一段退火的3’-磷酸化的“阻斷物”，會被逐個切除而不會阻止來自上游引物鏈的延伸，而對于5’-³²P標(biāo)記的合成寡核苷酸引物，則無論是單鏈或是與模板復(fù)性，都未發(fā)現(xiàn)降解，所以該種活性不會影響PCR結(jié)果。Taq酶沒有3’→’5’外切酶活性，如果發(fā)生dNTP錯誤摻入，這種酶沒有校正能力，因此運(yùn)用Taq酶進(jìn)行PCR，產(chǎn)物中點突變較多，對克隆等不太有利。一般錯摻率為1.25×10^-4~1×10^-5(4×dNTPs濃度分別為200μmol/L，Mg²⁺為1.5mmol/L，在55℃退火)。但不含3’→5’外切酶活性對測序有利。

2．影響酶活力的因素Taq酶的活力受Mg²⁺離子的影響。用鯡精DNA為模板，總dNTP濃度0.7～0.8mmol/L,Mg²⁺為2.0mmol/L時激活能力最高。濃度超過此值產(chǎn)生抑制。10mmol/l MgCl₂抑制活力達(dá)40%～50%。dNTP能與Mg²⁺結(jié)合，故游離Mg²⁺只是結(jié)合后剩余的量。若總dNTP濃度高至4～6zxtf.net.cn/shiti/mmol/L時,Taq酶活力要降低20～30%，即底物抑制。

dNTP濃度低時PCR產(chǎn)率及特異性均增高，適合于用擴(kuò)增摻入法標(biāo)記生物素及放射性元素。當(dāng)100μl　PCR液中含dNTP各zxtf.net.cn/job/40μmol/L時就足以合成2.6μg的DNA（dNTP消耗一半)。

表22-3 有機(jī)溶劑對Taq聚合酶活力的影響

用鯡精DNA，70℃，10min內(nèi)dNTP的摻入量計算，標(biāo)準(zhǔn)條件為100%。

純9.4KDa Taq酶不含3’→5’核酸外切酶活力。誤摻入率取決于dNTP濃度。但Taq酶具有DNA依賴的鏈移位5’→3’核酸外切酶活力。對5’→3’³²P標(biāo)記寡核苷酸單鏈，或與MB模板雜交時均只有極少的降解力。

中等濃度KCl能刺激Taq酶合成活力達(dá)50%～60%，最佳KCl濃度為50mmol/L，濃度更高有抑制作用，>200mmol/L的KCl可使酶失活。

加入50mmol/L NH₄Cl或NH₄Ac或NaCl,可產(chǎn)生中度抑制或無作用。

低濃度尿素、DMSO、DMF或甲酰胺影響不大，吐溫20/NP40可消除SDS（0.01%及0.1%)的抑制作用。

3．第二代耐熱DNA聚合酶Stoffel片段：Cetus公司的Stoffel將TaqDNA聚合酶的5’→3’外切酶活性片段（N端289個氨基酸)去除，稱為stoffel片段。其97.5℃的半衰期從Taq DNA聚合酶的5～6min提高到20min，同時該酶片段也對兩個或更多模板位點的擴(kuò)增反應(yīng)即復(fù)合PCR（Multiplex PCR)更為有利。

Vent^TMDNA多聚酶：是美國New England Biolabs公司從潛水艇排氣孔（Vent)中分離的超級嗜熱菌-能生長于98℃中的Thermococcus litoralis中分離純化得到的，故名Vent酶。它的一些酶學(xué)性質(zhì)較Taq DNA聚合酶更為優(yōu)越，它能耐100℃高溫且2h以上仍有活力，并且具有3’→5’外切酶活性的校正能力，錯誤擴(kuò)增的機(jī)率比Taq酶降低一倍。后來該公司又從深水潛艇（2010m)排氣孔分離的能在104℃生長的Pyococcus菌GB-D株植入Deep Vent DNA聚合酶基因而表達(dá)的Deep Vent DNA聚合酶，在95℃的半壽期達(dá)23h（Vent酶為6.7h,Taq酶為1h)。

4．RTth逆轉(zhuǎn)錄酶（rTth Reverse Transcriptase)目前逆轉(zhuǎn)錄-PCR（RT-PCR)的發(fā)展很快，所以對耐熱的依賴于RNA的DNA多聚酶的研究也有進(jìn)展。有實驗表明Taq DNA多聚酶有依賴于RNA的DNA聚合酶活性，但活性較弱。Cetus公司于1991年推出一種rTth Reverse Tran－scriptase,有很好的依賴于RNA的耐熱DNA聚合酶活性和依賴于DNA的耐熱DNA聚合酶活性，二種活性分別依賴于Mn²⁺Mg²⁺，這樣就可分別控制酶活性。利用該酶只需250ng的總RNA即可有效地進(jìn)行RT-PCR，得到特異的DNA片段，從而非常有利于逆轉(zhuǎn)錄PCR的發(fā)展。

耐熱DNA聚合酶的研究近幾年來得到長足的發(fā)展，這在PCR發(fā)展中起到了重要的作用。我們相信隨著進(jìn)一步的研究，將使人們對耐熱DNA聚合酶的認(rèn)識和應(yīng)用更進(jìn)一步地發(fā)展。

我國的PCR研究發(fā)展很快，其關(guān)鍵試劑-耐熱DNA聚合酶-也已有幾個實驗室能夠分離純化，如復(fù)旦大學(xué)遺傳學(xué)研究所、華美公司、中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所。后二者的菌株為Thermus aquaticus YT-1。前者則是從自己篩選的嗜熱菌中分離純化，復(fù)旦大學(xué)遺傳所亦已成功地克隆了該聚合酶的基因并獲得了耐熱F₄DNA聚合酶，其酶學(xué)性質(zhì)非常接近于Taq DNA聚合酶，為我國PCR的開展提供了保證。

四、影響PCR特異性的因素

通過上述內(nèi)容�？梢钥闯鲇性S多因素可以影響PCR的特異性，在此我們作一歸納，供大家參考：①退火步驟的嚴(yán)格性：提高退火溫度可以減少不匹配的雜交，從而提高特異性。②減短退火時間及延伸時間可以減少錯誤引發(fā)及錯誤延伸。③引物二聚體是最常見的副產(chǎn)品，降低引物及酶的濃度也可以減少錯誤引發(fā)，尤其是引物的二聚化。④改變MgCl₂(有時KCl)濃度可以改進(jìn)特異性，這可能是提高反應(yīng)嚴(yán)格性或者對Taq酶的直接作用。⑤模板中如果存在次級結(jié)構(gòu)，例如待擴(kuò)增的片段易自行形成發(fā)夾結(jié)構(gòu)時，可在PCR混合物中的4×dNTPs中加入7-脫氮-2’-脫氧鳥苷-5’-三磷酸（7-deaza-2’-deoxyguanosine-5’-trihosphate)(de⁷GTP)。用de⁷GTP與dGTP比例為3：1的混合物（150μmol/l de⁷GTP +50μmol/L dGTP)代替200μmol/l dGTP，則可阻非特異性產(chǎn)物的生成。

五、擴(kuò)增平坡

擴(kuò)增反應(yīng)并不是可以無窮地進(jìn)行下去的，經(jīng)過一定的循環(huán)周期后需擴(kuò)增的片段不再按指數(shù)增多而逐漸進(jìn)入平坡；進(jìn)入平坡的循環(huán)次數(shù)，取決于起始時存在的模板拷貝數(shù)以及合成的DNA總量。所謂平坡就是批PCR循環(huán)的后期，合成產(chǎn)物達(dá)0.3～1pmol時，由于產(chǎn)物的堆積，使原來以指數(shù)增加的速率變成平坦的曲線。

造成PCR進(jìn)入平坡的原因有：引物和dNTP等消耗完畢、Taq酶失活，這幾中因素在標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)中均不會出現(xiàn)。此外，還有幾種可能：

1．底物過剩因DNA合成量多于反應(yīng)液中存在的Taq酶，在100μl反應(yīng)液中含2.5Utaq酶而DNA合成量達(dá)1μg（3nmol脫氧核苷酸)時，開始變?yōu)榈孜镞^剩。延長延伸時間或添加Taq酶，可以克服之。但不實用，因每進(jìn)行下一循環(huán)就要延長延伸時間一倍及多加一倍Taq酶，才能繼續(xù)保持指數(shù)增長。

2．非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物的競爭與上述情況密切相關(guān)，此時不需要的DNA片段與需要的片段同時競爭聚合酶，要克服這一情況是要提高反應(yīng)特異性，使不需要片段不能大量積聚。

3．退火時產(chǎn)物的單鏈自己締合兩條單鏈的DNA片段在退火時除了與引物締合外，也可以自行締合，這也會阻止產(chǎn)品增多。當(dāng)產(chǎn)物濃度到達(dá)10pmol/100μl時即可發(fā)生此現(xiàn)象，除稀釋外無法克服。

4．變性在高濃度產(chǎn)物條件下，產(chǎn)物解鏈不完全，以及最終產(chǎn)物的阻化作用（焦磷酸化，雙鏈DNA)。

總而言之，PCR的條件是隨系統(tǒng)的而異的，并無統(tǒng)一的最佳條件，先選用通用的條件擴(kuò)增，然后稍稍改變各參數(shù)，可以達(dá)到優(yōu)化，以取得優(yōu)良的特異性和產(chǎn)率。